一、勻漿介質(zhì)的制備:

一般采用pH 7.4, 0.01mol/L Tris-HCl, 1mmol/L EDTA-2Na, 0.01mol/L蔗糖,0.8%氯化鈉溶液或直接用0.86%的生理鹽水作為勻漿介質(zhì)。

二、組織勻漿的制備
    
1、取組織塊（0.1g～0.2g）*少可到2～5mg在冰冷的生理鹽水中漂洗，除去血液，濾紙拭干，準確稱重，放入5ml的勻漿管中。
    
2、按重量(g):體積(ml)=1:9的比例加入9倍體積的勻漿介質(zhì)（pH7.4， 0.01mol/L Tris-HCl，1mmol/L EDTA-2Na ,0.01mol/L蔗糖,0.8%的氯化鈉溶液）或者0.86%的生理鹽水于勻漿管中，冰水浴條件下,用眼科小剪盡快剪碎組織塊。
    
3、勻漿的方式有多種：手工勻漿，機器勻漿，超聲粉碎。
    
① 手工勻漿：左手持勻漿管將下端插入盛有冰水混合物的器皿中，右手將搗桿垂直插入套管中，上下轉動研磨數(shù)十次（6～8分鐘），充分研碎，制成10%的勻漿液。
    
② 機器勻漿：用組織搗碎機10000～15000 轉/分 上下研磨制成10%組織勻漿，也可用內(nèi)切式組織勻漿機制備（勻漿時間10秒/次，間隙30秒，連續(xù)3～5次，在冰水中進行），皮膚、肌肉組織等可延長勻漿時間。
    
③ 超聲粉碎：用超聲粉碎機進行粉碎，可用Soniprep150型超聲波發(fā)生器以振幅14微米超聲處理30秒使細胞破碎，也可用國產(chǎn)超聲波發(fā)生儀，用400安培，5秒/次，間隙10秒反復3～5次。
    
鏡檢觀察:取少量組織勻漿作涂片（直接涂片、染色均可以），顯微鏡下觀察細胞是否破碎，若沒有則可延長勻漿時間。
    
4、將制備好的10%勻漿液用普通離心機或低溫低速離心機2500轉/分左右,離心10～15分鐘，取上清液進行測定.

三、樣本保存:
    
動物組織樣本暫時不測定，可立即低溫凍存，溫度越低越好，中間如*凍融，-20℃以下可保存三個月,-70℃以下可保存六個月。